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Enfermedad de la bola de cañón de la sandía: ¿qué causa la pudrición de la raíz de la sandía?

Enfermedad de la bola de cañón de la sandía: ¿qué causa la pudrición de la raíz de la sandía?


Por: Darcy Larum, paisajista

La pudrición de la raíz de la sandía es una enfermedad fúngica causada por el patógeno. Monosporascus cannonballus. También conocido como declive de la vid de sandía, puede causar una pérdida masiva de cultivos en las plantas de sandía afectadas. Obtenga más información sobre la devastadora enfermedad en este artículo.

Pudrición de raíces y vid de cultivos de sandía

Esta enfermedad prevalece en climas cálidos y se sabe que causa una pérdida masiva de cultivos en los Estados Unidos en Texas, Arizona y California. La enfermedad de la bala de cañón de la sandía también es un problema en México, Guatemala, Honduras, Brasil, España, Italia, Israel, Irán, Libia, Túnez, Arabia Saudita, Pakistán, India, Japón y Taiwán. El declive de la vid de sandía es generalmente un problema en sitios con suelos arcillosos o limosos.

Los síntomas de la raíz de monosporascus y la pudrición de la vid de la sandía a menudo pasan desapercibidos hasta unas semanas antes de la cosecha. Los primeros síntomas son plantas atrofiadas y coloración amarillenta de las hojas viejas de la corona de la planta. El color amarillento y la caída del follaje se moverán rápidamente a lo largo de la vid. Dentro de los 5-10 días posteriores a las primeras hojas amarillas, una planta infectada puede estar completamente defoliada.

Las frutas pueden sufrir quemaduras solares sin el follaje protector. Es posible que se vean rayas o lesiones marrones empapadas en la base de las plantas infectadas. Las frutas de las plantas infectadas también pueden atrofiarse o caer prematuramente. Cuando se desentierran, las plantas infectadas tendrán raíces pequeñas, marrones y podridas.

Control de la enfermedad de Sandía Cannonballus

La enfermedad de la bala de cañón de la sandía se transmite por el suelo. El hongo puede acumularse en el suelo año tras año en sitios donde se plantan regularmente cucurbitáceas. La rotación de cultivos de tres a cuatro años en cucurbitáceas puede ayudar a controlar la enfermedad.

La fumigación del suelo también es un método de control eficaz. Los fungicidas administrados mediante riego profundo a principios de la primavera también pueden ayudar. Sin embargo, los fungicidas no ayudarán a las plantas ya infectadas. Por lo general, los jardineros aún pueden cosechar algunas frutas de las plantas infectadas, pero luego las plantas deben desenterrarse y destruirse para evitar una mayor propagación.

Actualmente se encuentran disponibles muchas variedades nuevas de sandía resistentes a enfermedades.

Este artículo se actualizó por última vez el

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Áreas del programa

La enfermedad de la vid amarilla de las cucurbitáceas apareció por primera vez en calabazas y calabazas en el área vegetal de Cross Timbers de Texas y Oklahoma en 1988. Para 1991, estaba causando pérdidas a gran escala de sandías y melones en esta misma región. Desde entonces, se ha confirmado la presencia de la enfermedad en Arkansas, Colorado, Kansas, Nebraska, Massachusetts, Missouri y Connecticut. En los estados que tienen antecedentes de CYVD, la incidencia de la enfermedad suele ser irregular dentro de un campo y los campos adyacentes pueden verse afectados o no. Puede estar ausente en algunos años o puede causar malas cosechas generalizadas en otros años.

En 2004, dos granjas de calabazas en Ellington, Connecticut tuvieron brotes de CYVD. En el primer campo, el follaje de unas pocas docenas de enredaderas se tornó de color amarillo brillante al cuajar los frutos. Se diagnosticó erróneamente que estas plantas tenían marchitez bacteriana y se extrajeron del campo para ayudar a prevenir la propagación secundaria de la enfermedad por el insecto vector. No se observaron más síntomas en este campo hasta poco antes de la cosecha, cuando las vides declinaron. La fruta se volvió blanda y se perdió debido a una combinación de enfermedades, entre ellas Fusarium pudrición de la corona y del fruto, Phytophthora plaga, Sclerotinia moho blanco y posiblemente CYVD. Las muestras de este primer campo no se enviaron a Oklahoma para las pruebas de CYVD hasta que se confirmó la enfermedad en un segundo campo de calabazas cercano. Las vides en el segundo campo comenzaron a mostrar síntomas a fines de agosto cuando la fruta comenzó a alcanzar todo su color. El follaje de muchas de las enredaderas comenzó a ponerse amarillo y declinar. La fruta de este campo se cosechó temprano y se vendió alrededor del Día del Trabajo para evitar pérdidas de cosechas. Ambos campos habían sido rotados sin cultivos de cucurbitáceas durante los 2-3 años anteriores, y ambos fueron tratados con un insecticida para escarabajos del pepino y el programa recomendado de fungicidas sistémicos y de contacto para detener el complejo de la enfermedad de las cucurbitáceas: mildiú polvoriento y velloso, podredumbre negra , costra y Plectosporium plaga.

La enfermedad de la vid amarilla de las cucurbitáceas es causada por la bacteria, Serratia marcescens. La bacteria sobrevive al invierno en los insectos de la calabaza y se propaga a las plantas jóvenes en la primavera cuando los insectos colonizan y se alimentan de los cultivos de cucurbitáceas. Las plántulas jóvenes en la primera etapa de desarrollo de la hoja verdadera son más susceptibles a la transmisión de enfermedades que las plántulas más viejas.

No se cree que la propagación de CYVD entre plantas dentro del campo contribuya mucho a la gravedad de la enfermedad porque la progresión de los síntomas suele ser muy lenta. Las bacterias residen y se multiplican y eventualmente obstruyen el tejido del floema del sistema vascular de la planta. Por lo general, los síntomas no se detectan hasta justo antes de la cosecha.

Sin embargo, algunas plantas inmaduras sintomáticas o asintomáticas pueden colapsar repentinamente a la mitad de la temporada o justo después del cuajado. Por lo general, todas las hojas se vuelven amarillas en unos pocos días, comenzando aproximadamente una semana o dos antes de la cosecha. Las hojas terminales se mantienen erguidas, no se expanden y los márgenes se curvan hacia adentro. Las hojas más viejas desarrollan márgenes chamuscados y pueden morir. El floema en la corona y el tallo inferior se vuelve de color miel. Eventualmente, la raíz comienza a descomponerse, un proceso que es acelerado por organismos secundarios de pudrición, y toda la planta comienza a decaer y morir. La fruta de la sandía se vuelve amarilla cuando las hojas comienzan a decolorarse. Otras frutas generalmente no muestran síntomas.

En Texas, muchos productores han utilizado con éxito la calabaza de verano de cuello recto ('Lemon Drop' o 'Hyrific') como cultivo trampa en las hileras fronterizas de sus campos de sandías para atraer y controlar las chinches de la calabaza para controlar la CYVD.

Las plantas de cultivo trampa deben tener 2-3 semanas más que el cultivo principal para atraer a los insectos. Un investigador dijo que hasta el 100% de los insectos serán atraídos a las hileras fronterizas y muertos por aplicaciones de insecticidas, y que la técnica casi ha eliminado CYVD en su región durante los últimos 5 años. Esta técnica de cultivo trampa es notablemente similar al sistema de cultivo trampa perimetral que los productores de Nueva Inglaterra han estado usando para controlar los escarabajos del pepino y la marchitez bacteriana en cultivos de cucurbitáceas. Los insectos de la calabaza se sienten más atraídos por la calabaza Hubbard, la calabaza de verano, las calabazas, las sandías, los melones, los pepinos y la calabaza en orden decreciente. El uso de nuestro sistema de cultivo de trampa perimetral existente, con 'Blue Hubbard' plantado temprano alrededor de calabazas plantadas más tarde (u otras cucurbitáceas), puede controlar cuatro plagas (chinches de calabaza y CYVD, escarabajos del pepino y marchitez bacteriana) con tan solo un rocío de borde. Mida el tiempo de la aspersión del cultivo trampa justo antes de la emergencia del cultivo principal y, si se necesita una segunda aplicación, en la primera etapa de la hoja verdadera del cultivo principal.

  • Bonjour, E. L., W. S. Fargo y P. E. Rensner. 1990. Preferencia de oviposición de chinches de calabaza (Hemiptera: Coreidae) entre cucurbitáceas en Oklahoma. J. Econ. Entomol. 83 (3): 943-947.
  • Bruton. B. D. 1998. Asociación de una bacteria limitada por ploema con la enfermedad de la vid amarilla en las cucurbitáceas. Plant Dis. 82: 512-520.
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Por: T. Jude Boucher, Universidad de Connecticut, mayo de 2005. Revisado en 2012.

La información de este documento es solo para fines educativos. Las recomendaciones contenidas se basan en el mejor conocimiento disponible en el momento de la publicación. Cualquier referencia a productos comerciales, nombres comerciales o de marca es solo para información y no se pretende respaldo ni aprobación. El Sistema de Extensión Cooperativa no garantiza ni garantiza el estándar de ningún producto al que se hace referencia ni implica la aprobación del producto con exclusión de otros que también puedan estar disponibles. La Universidad de Connecticut, el Sistema de Extensión Cooperativa, la Facultad de Agricultura y Recursos Naturales es un proveedor y empleador de programas que ofrece igualdad de oportunidades.


Pudrición de la raíz por Monosporascus y declive de la vid

AGENTE CAUSAL

DISTRIBUCIÓN

SINTOMAS

Los síntomas iniciales incluyen retraso del crecimiento y crecimiento deficiente de las plantas. Sin embargo, esto puede pasar desapercibido si todo un campo se ve afectado de manera uniforme. Las hojas más viejas de la corona comienzan a volverse cloróticas, se marchitan y colapsan a las pocas semanas de la cosecha. Dentro de los cinco a diez días de los primeros síntomas foliares, la mayor parte del dosel puede morir. Se forman lesiones de color canela a marrón rojizo en las raíces. La infección de la raíz conduce a la pérdida de las raíces alimentadoras. Eventualmente, el sistema de raíces puede volverse necrótico, resultando en la muerte de la planta. Se forman peritecios grandes y negros en las raíces muertas y, a menudo, son visibles. Los frutos de las plantas enfermas son más pequeños o están agrietados y pueden separarse del pedículo antes de madurar y tener un contenido de azúcar reducido. La fruta también puede quemarse con el sol debido a la falta de follaje. Por lo general, faltan lesiones en el tallo y los síntomas por encima del suelo pueden confundirse con otros declives de la vid.

Peritecios sobre raíces de melón. (Cortesía de Gerald Holmes)

CONDICIONES PARA EL DESARROLLO DE ENFERMEDADES

Infección por Monosporascus cannonballus se cree que ocurre a principios de la temporada, sin embargo, se fomenta la colonización de tejidos a medida que aumenta la temperatura del suelo. Este aumento de la temperatura del suelo favorece la formación de peritecios en las raíces. Las ascosporas son las estructuras de supervivencia a largo plazo del hongo. La propagación de enfermedades se produce por el movimiento de suelo infestado o material vegetal infectado.

CONTROL

Administración de Monosporascus cannonballus ha demostrado ser difícil debido a su tolerancia al calor y sus estructuras de descanso de paredes gruesas. Evite plantar melones y sandías en campos infestados conocidos. Además, evite el riego excesivo, que solo puede retrasar el colapso de las plantas. Se ha demostrado que es beneficioso permitir que las raíces infestadas se sequen en el campo y luego fumigarlas poco después de la cosecha. El uso de portainjertos ha sido beneficioso en la sandía, aunque se necesita un trabajo adicional para el melón. También se ha demostrado que la quimigación a través de líneas de riego por goteo es eficaz.


Resistencia en melón a Monosporascus cannonballus y M. eutypoides: Hongos patógenos asociados con la pudrición de la raíz por Monosporascus y el declive de la vid

Instituto de Conservación y Mejora de la Agrodiversidad (COMAV), Universitat Politècnica de València, Valencia, España

Instituto de Conservación y Mejora de la Agrodiversidad (COMAV), Universitat Politècnica de València, Valencia, España

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Instituto Agroforestal Mediterráneo, Universitat Politècnica de València, Valencia, España

Instituto de Conservación y Mejora de la Agrodiversidad (COMAV), Universitat Politècnica de València, Valencia, España

Instituto de Conservación y Mejora de la Agrodiversidad (COMAV), Universitat Politècnica de València, Valencia, España

Ana Pérez ‐ de ‐ Castro, Instituto de Conservación y Mejora de la Agrodiversidad (COMAV), Universitat Politècnica de València, Camino de Vera 46022, Valencia, España.

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Gabriel Castro y Gorka Perpiñá contribuyeron igualmente a este artículo.

Información de financiación: Generalitat Valenciana, Beca / Número de premio: PROMETEO2017 / 078 Ministerio de Economía y Competitividad, Beca / Número de premio: AGL2014‐53398 ‐ C2‐2 ‐ R Ministerio de Ciencia, Innovación y Universidades de España, Número de Beca / Premio: AGL2017‐85563 ‐ C2 ‐1 ‐ R

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Resumen

La especie de hongos Monosporascus cannonballus y METRO. eutipoides se han descrito como los agentes causales de la pudrición de la raíz por Monosporascus y la enfermedad de declive de la vid (MRRVD), que afecta principalmente a los cultivos de melón y sandía. Resistencia a METRO. bala de cañón se ha informado en algunos cultivares de melón (ssp. melo). Además, melon ssp. agrestis las accesiones han demostrado ser mejores fuentes de resistencia. Este es el caso de la accesión coreana "Pat 81", altamente resistente en campo y en inoculación artificial. El objetivo del trabajo aquí presentado fue la evaluación de la resistencia a MRRVD de diferentes accesiones que representan la variabilidad de Cucumis melo ssp. agrestis, contra ambos, METRO. bala de cañón y METRO. eutipoides, en un ensayo de varios años en diferentes condiciones de infección. En general, METRO. eutipoides fue menos agresivo que METRO. bala de cañón en las diferentes condiciones ambientales. Hubo una fuerte influencia de la temperatura en la MRRVD, con síntomas más severos con temperaturas más altas y con un efecto variable de la infección en el desarrollo de la planta dependiendo de la especie fúngica considerada. La resistencia a MRRVD se ha confirmado en "Pat 81" y en su F1 derivado con un melón Piel de Sapo susceptible. Entre el nuevo germoplasma explorado, las accesiones africanas (ambas silvestres agrestis y ácido cultivado exótico) mostraron un buen desempeño en ensayos de inoculación artificial y en condiciones de campo. Estas fuentes no presentan problemas de compatibilidad con melones comerciales, por lo que pueden introducirse en programas de retrocruzamiento. La accesión ensayada del pariente silvestre Cucumis metuliferus, también resistente al marchitamiento por Fusarium y al nematodo agallador, fue altamente resistente a MRRVD. El interés de esta accesión radica principalmente en sus ventajas como patrón para el melón.

Apéndice S1: Información de soporte

TABLA S1 Correlaciones entre vigor, raíces y parámetros de peso y longitud de la vid, índices de enfermedad y parámetros medidos con WinRhizo, para los seis ensayos de inoculación artificial.

TABLA S2 Parámetros de peso y longitud de raíz y de vid, índices de enfermedades y parámetros medidos con WinRhizo, para los seis ensayos de inoculación artificial.

Tenga en cuenta: El editor no es responsable del contenido o la funcionalidad de la información de apoyo proporcionada por los autores. Cualquier consulta (que no sea contenido faltante) debe dirigirse al autor correspondiente del artículo.


Ver el vídeo: Identifying and Treating Watermelon Diseases